|
О. В. Гудзь, Ю. Н. Анисимова, Е. И. Яловенко Влияние консервантов на процесс регенерации кожиИнститут пищевой химии и технологии НАН Украины, г. Киев Косметические средства с высоким содержанием водной фазы (гели косметические, косметическое молочко, косметические сливки, тоники и др.) представляют собой благоприятную среду для развития микроорганизмов, которые могут обусловить гнойничковые заболевания кожи и слизистых оболочек (культуры Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Proteus vulgaris) или порчу готовой продукции (культуры плесневых грибов, дрожжеподобных грибов рода Candida). Для предотвращения контаминации микроорганизмами и порчи косметических средств применяют консерванты, которые вводят в состав косметического средства. Ассортимент консервантов, применяемых в косметологии, обширен. Приложение VI часть I Директивы 76/768 ЕС регламентирует применение 47 основных консервантов различных классов химических соединений, среди которых наиболее широко используют парабены, гермаль 115, бронопол, формальдегид, довицил 200, катон, гермабен [1]. Отмечается тенденция к увеличению объемов потребления глиданта и триклозана. Расширение и обновление существующего ассортимента консервантов, с одной стороны, позволяет удовлетворять растущие потребности населения в современных высокоэффективных косметических средствах полифункционального типа действия, с другой — повышает вероятность возникновения нежелательных побочных эффектов, которые в ряде случаев могут носить токсический характер, поскольку консерванты, независимо от их происхождения (натуральные, очищенные аналоги натуральных, синтетические), могут проявлять активность, выходящую за пределы физиологических потребностей кожи и/или слизистых оболочек, т. е. прямо или опосредованно оказывать неблагоприятное влияние на структурно-функциональное состояние кожи, ее придатков, слизистых оболочек или организма в целом. Среди побочных эффектов большинства консервантов следует отметить их отрицательное влияние на процесс регенерации кожи. Цель работы — провести сопоставительное изучение влияния некоторых консервантов (бензойнокислый натрий, гермабен, Димол-П), а также спирта этилового (массовая доля 10%) на процесс регенерации кожи крыс на модели линейных ран. Методика постановки исследований изложена в [2]. Течение раневого процесса оценивали на основании установления сроков клинического заживления ран и результатов гистологического исследования микропрепаратов. При этом основное внимание уделяли степени выраженности патологических изменений в зоне повреждения (гиперемия, кровоизлияния, отек, воспалительная реакция) и регенеративных процессов (собственно грануляционная ткань, бессосудистый слой новообразованной соединительной ткани, эпителизация). В результате проведенных исследований установлено, что у животных контрольной и подопытных групп заживление ран происходило вторичным натяжением. Морфологические изменения носили однотипный характер, различной была лишь степень выраженности отдельных звеньев процесса регенерации. У животных контрольной группы (I группа) в первые сутки после нанесения ран отмечалось небольшое увеличение тканевого дефекта, который был выполнен свертком крови. Вокруг зоны повреждения отмечались нарушения микроциркуляции (лимфо- и гемостаз с агглютинацией эритроцитов, набухание эндотелиоцитов и базальной мембраны сосудов, резкий отек, периваскулярные отложения фибрина, диапедезные геморрагии) и выраженная воспалительная реакция в сосочковом слое дермы, особенно в подкожном слое (демаркационное воспаление). На вторые сутки опыта эпидермис по краям раны под струпом начинал загибаться, плотно прилегая к стенке раневого канала. В подкожной ткани в области дна раны появлялись единичные макрофаги. К 3 суткам опыта количество нейтрофилов резко уменьшалось в результате лизиса и фагоцитоза их макрофагами. Воспалительная реакция переходила в макрофагальную фазу. Среди клеток, инфильтрирующих стенки раны, и в подкожной ткани преобладали мононуклеары (главным образом моноциты), макрофаги, гистиоциты, единичные плазматические клетки. Гранулоциты сохранялись лишь на дне раны. В этот же срок начиналась регенерация эпителия и формирование на месте дефекта грануляционной ткани (рост капилляров, появление фибробластов). На 5 сутки пролиферирующий эпителий покрывал грануляционную ткань только у краев раны (грануляции не полностью выполняют раневой канал, наблюдается рост 2–3-рядного эпителия под струпом по боковой поверхности раневого канала). К 7 суткам дифференцирующийся на слои эпидермис не полностью перекрывал раневую щель, заполненную молодой грануляционной тканью, т. е. отмечалось частичное заживление раны с помощью рубца. К 14 суткам имела место перестройка рубца (новообразование коллагеновых волокон, горизонтальная их ориентация). У животных II группы, получавших аппликации этиловым спиртом, морфологические изменения в области раны в 1 и 2 сутки опыта были аналогичны таковым у животных контрольной группы, за исключением более выраженного на вторые сутки воспалительного процесса с формированием лейкоцитарного вала (тромбоз венул, скопление гранулоцитов типа “микроабсцессов” в подкожной ткани). В этот же срок появлялись единичные макрофаги. К 3–5 суткам у отдельных крыс этой группы, в отличие от контрольных животных, регенерация эпителия, который “наползал” на молодую грануляционную ткань, была более интенсивной. Однако на 7 сутки ни у одной крысы II группы не наблюдалось полного заживления ран (струп и содержимое раневого канала характеризуются значительным скоплением гранулоцитов, что свидетельствует о замедлении процесса очищения раны). К 14 суткам опыта многослойный эпителий покрывал место раны, но у всех животных этой группы процесс очищения раневого канала не был завершен (при полной эпителизации дефекта кожи, в подкожной клетчатке абсцедирование как следствие замедления процесса очищения раны). У животных III группы, получавших аппликации Димолом-П, начиная с первых суток опыта отмечалась менее выраженная воспалительная реакция, чем у контрольных крыс, с резко выраженной макрофагальной реакцией (начиная со 2 суток опыта). У одной крысы этой группы в этот срок выявлено начало регенерации эпидермиса (в контроле — на 3 сутки), раневой канал покрыт струпом, заполнен экссудатом, в котором обнаруживаются скопления гранулоцитов и нити фибрина. На дне раны отмечается рост грануляций. По краю стенки раны под струпом — рост эпителия. Отмечается выраженная макрофагальная реакция в подкожной клетчатке в области дна раны, что свидетельствует об интенсификации процесса очищения раны. Интенсивность регенеративного процесса, нарастая к 3 суткам, была более выражена, чем у крыс контрольной группы. Полное заживление кожного дефекта у отдельных крыс наблюдалось на 5 сутки, у большинства животных группы — на 7 сутки опыта (раневой канал полностью выполнен грануляциями с большим числом макрофагов, фибробластов, гистиоцитов, полнокровных капилляров, полная эпителизация кожного дефекта). У животных IV группы, получавших аппликации гермабеном, на вторые сутки наблюдался рост многослойного эпидермиса на фоне умеренно выраженного воспалительного процесса с наличием макрофагов в инфильтратах подкожного слоя (раневой канал покрыт струпом, заполнен экссудатом, в котором обнаруживаются скопления гранулоцитов и нитей фибрина, на дне раны обнаруживаются грануляции, по краю боковой поверхности раны отмечается рост эпителия). К 3 суткам воспалительная реакция переходила в макрофагальную фазу, а к 5–7 суткам у большинства крыс этой группы эпидермис почти полностью перекрывал раневой канал, заполненный грануляционной тканью (раневой канал полностью выполнен грануляциями с большим числом макрофагов, фибробластов и полнокровных капилляров, полная эпителизация кожного дефекта). К 14 суткам в рубце, сформировавшемся на месте тканевого дефекта, происходили процессы коллагенизации. У животных V группы, получавших аппликации бензойнокислым натрием, воспалительная реакция переходила в макрофагальную фазу начиная с 3 суток опыта (раневой канал покрыт струпом, заполнен экссудатом, в котором обнаруживаются скопления гранулоцитов и нити фибрина, грануляции не заполняют раневой канал, под струпом по краю стенки раны отмечается рост многослойного эпителия). К 5–7 суткам раневой канал полностью (у отдельных животных) или частично (у большинства животных) был выполнен грануляционной тканью, а эпидермис частично перекрывал рану, т. е. происходило заживление раны с образованием рубца (грануляции с большим числом макрофагов и полнокровных капилляров полностью заполняют раневой канал, многослойный эпителий не полностью перекрывает раневой канал). К 14 суткам в последнем выявлено начало коллагенизации. Анализ и обобщение представленных результатов позволяют считать, что Димол-П, гермабен и бензойнокислый натрий стимулируют процесс регенерации эпителия крыс. Миграция эпителия у крыс III, IV и V, как и у крыс контрольной группы, происходила под лейкоцитарным валом, отделяющим поврежденную ткань от жизнеспособной. Сроки ее были ускорены у животных III, I V и V групп. Отмечено также более раннее замещение провизорных эпителиальных пластов зрелыми, многослойными, растущими по грануляционной ткани. Так, дифференцирующийся на слои, пролиферирующий эпителий, перекрывающий рану, заполненную молодой грануляционной тканью, впервые отмечен у части животных, получавших аппликации Димолом-П и гермабеном, на 5 сутки опыта (заживление в контроле — на 7 сутки). Образование и созревание грануляционной ткани на месте тканевого дефекта, особенно в верхних отделах ран, было более быстрым у животных, получавших аппликации Димолом-П, гермабеном и бензойнокислым натрием. При этом на границе с демаркационным слоем имелись значительные скопления активных макрофагов, а в инфильтратах преобладали мононуклеары, которые составляли и значительную часть раневого экссудата. Периваскулярно довольно рано появлялись плазматические клетки. Димол-П, гермабен и бензойнокислый натрий по такому критерию, как влияние на процесс регенерации эпителия отвечают современным требованиям к консервантам для косметической промышленности. Спирт этиловый с массовой долей 10% тормозит процесс очищения ран, это свидетельствует о целесообразности пересмотра рекомендаций по использованию спирта этилового, а также спиртовых и водно-спиртовых экстрактов растительного сырья с целью предотвращения или снижения контаминации микроорганизмами косметических средств. Литература
© Провизор 1998–2022
|
Грипп. Прививка от гриппа
Нужна ли вакцинация?
Как и чем лечить кашель?
Безрецептурные лекарства при сухом и влажном кашле Устойчивость микробов к антибиотикам →
Помогает ли одежда из шелка лечить экзему?
Что лучше развивает ребёнка — книжки с картинками или с текстом? О безопасности автокресел для детей в возрасте от 4 до 12 лет
Аллергический ринит
Забеременеть в 40 Лечение бесплодия. Обзор существующих вариантов Аденома простаты. Как и чем лечить ? |
|||
|